建 立了高效液相色谱法（HPLC）测定含脂羊毛中的灭蝇胺和环虫腈的方法及HPLC-MS/MS确证方法。样品用80mL1%三氯乙酸溶液超声提取，MCX 柱净化，HypersilNH2色谱柱分 离，水-乙腈为流动相梯度洗脱，214nm检测，HPLC-MS/MS确证。在正离子电喷雾电离（ESI ）模式下，环虫腈[M H]＋及2个主要的特征离子分别为m/z191.0，150.0和163.0；灭蝇胺[M H]＋及2个主要的特征离子分别为m/z167.0，85.0和125.0。在0.05~5.0mg/L范围内，灭蝇胺和环虫腈均有良好的线性关系，相关 系数均为0.9999。本方法的检出限灭蝇胺为0.02mg/kg，环虫腈为0.01mg/kg。方法的平均加标回收率：灭蝇胺为 95.0%~99.9%，环虫腈为83.6%~92.2%。

      1引言灭蝇胺，又名环丙氨嗪，是三嗪类昆虫生长调节剂，可抑制双 翅目及部分鞘翅目昆虫幼虫的生长发育和羽化，被广泛添加到动物饲料中，用于控制动物厩舍内蝇蛆的生长发育。其在动物体内的代谢物三聚氰胺，能导致小鼠膀胱 肿瘤，美国和欧盟各国均制定了严格的饲料添加浓度和畜产品中的最高残留限量为0.05mg/kg。环虫腈，又名地昔尼尔，是干扰昆虫表皮形成的昆虫生长调 节剂，具有很强的附着力，对体外寄生虫具有良好的持效性，能有效防治棉花、玉米等作物的绿盲蝽象、烟芽夜蛾、棉铃象等害虫，并有效防治家蝇和埃及伊蚊。 1992年国际羊毛局为关注生态环境，开始对含脂羊毛进行药物残留检测[1]，1994年在羊毛中检出灭蝇胺，1999年检出环虫腈。欧盟有关纺织品生态 标签（Eco-labe1）标准的指令（2002／37I／EC）和国际纺织品生态学研究与检测协会的生态纺织品标准100（Oeko- Texstandard100）都对杀虫剂在羊毛或纺织品中的残留提出了限量要求。2007年修订的Eco-labe1标准[2]规定，昆虫生长调节剂在 含脂羊毛及其它含角蛋白纤维中的残留不得超过2mg/kg。

      目前，有关灭蝇胺和环虫腈残留量检测方法较少[3~8]，主要 有 蔬菜和土壤中灭蝇胺及其代谢物三聚氰胺的检测，检测方法主要有HPLC，HPLC-MS/MS和GC-MS，而含脂羊毛中灭蝇胺、环虫腈残留量检测方法未 见报道。灭蝇胺、环虫腈与三聚氰胺的化学结构相似，本研究参考文献[3～12]，建立了三氯乙酸溶液提取，MCX柱富集与净化，高效液相色谱（HPLC） 检测的方法。

      2实验部分2.1仪器与试剂Agilent1100HPLC（美国Agilent公 司）；API3000MS/MS串联质谱检测器（加拿大ABI公司）；SIGMA-3K台式高速冷冻离心机（Sigma公司）；QL-901旋涡混合器 （其林贝尔仪器制造公司）；固相萃取仪（Supelco公司）；N-EVAPTM氮吹仪；超声波清洗仪（50Hz）；OasisMCXSPE柱（美国 Waters公司）。

      灭蝇胺（Cyromazine）和环虫腈（Dicyclanil），购自Dr.Ehrenstorfer，纯度99.0%；乙腈和甲醇（HPLC级，Tedia公司），氨水和三氯乙酸（分析纯）；水为超纯水。

      含脂羊毛样品（利华羊毛工业有限公司，编号060427，070126，071031，070716，071012），－20℃保存。

      2.2试样前处理称取2g试样于250mL锥形瓶中，加入80mL1%三氯乙酸溶液，振荡，使溶液充分润湿羊毛后超声提取30min，过滤，取40mL滤液过SPE柱净化。

      分 别用6mL甲醇、6mL水预淋洗MCX柱，然后上试样，用6mL0.01mol/LHCl溶液洗涤MCX柱，再用6mL水和6mL甲醇洗涤MCX柱，抽干 后用10%氨水-甲醇溶液6mL洗脱并接收，洗脱液于40℃水浴中以氮气吹干，最后用1mL乙腈溶解并定容，过0.45μm滤膜后备用。

      2.3 色谱质谱条件HypersilNH2色谱柱（250mm×4.6mm，5μm）；柱温：30℃；流速：1.0mL/min；检测波长：214nm；进样 量：20μL。流动相：水（A）-乙腈（B），梯度洗 脱：0～5.5min，97%B；5.5～6min，97%→90%B；6～20min，90%B；20～21min，90%→97%B。

      MS/MS条件：正离子电喷雾电离（ESI ）；离子源雾化温度：500℃；碰撞气、气帘气和雾化气均为Ν２，流量分别为8，6和14mL/min；聚焦电压：82V；吸入电压：10V；碰撞电荷吸入电压：13V；以多反应监测模式测定；其它条件见表1。

      *：定量离子对（Ｑuantitativeions）。

      3 结果与讨论3.1提取净化条件的选择由于灭蝇胺和环虫腈均为极性物质，微溶于水，可溶于热水、乙醇，其结构与化学性质与三聚氰胺非常接近。常见的三聚氰胺 提取液有：磷酸盐缓冲溶液（pH2）、稀HCl、20%二乙胺、20%氨水-乙腈溶液、甲醇等。本研究比较了甲醇、乙腈、水和1%三氯乙酸水溶液等不同溶 剂的提取效果，最终选定以1%三氯乙酸为提取剂。比较了不同时间的提取效率，最终确定超声提取30min。灭蝇胺和环虫腈均为弱碱性化合物，比较了 ENVITM-Florisil小柱、WatersOasisHLB小柱及WatersOasisMCX小柱净化效果，实验表明，在 WatersOasisMCX固相萃取小柱上净化效果最好。在酸性条件下上样，使待测物保持正离子态而被吸附在固相萃取柱上，依次用 6mL0.01mol/LHCl溶液、6mL水和6mL甲醇洗涤MCX柱，再用6mL10%氨水-甲醇溶液洗脱，能有效去除基质干扰，可获得较高的回收率 和较好的重现性。

      3.2色谱条件的选择1，1’。环虫腈（Dicyclanil）；2，2’。灭蝇胺（Cyromazine）。

      在 190～400nm波长范围内对灭蝇胺、环虫腈混合标准溶液进行波长扫描，发现两种物质均在214nm处有较好吸收。本方法以214nm为检测波长。因灭 蝇胺和环虫腈均为极性物质，在普通的C18柱上保留值很低，很难进行分析。灭蝇胺和环虫腈极易与C18柱上残余的硅醇基形成氢键，使得峰形拖尾，因此需要 在流动相中加入离子对试剂或加酸可以增加C18柱对灭蝇胺和环虫腈的保留并改善峰形。本研究参考文献[3~1２]，对不同的C18柱和NH2柱进行了比 较，发现NH2柱分离效果优于C18柱，具体条件见2.3节。对杂质和目标峰能完全分离，并且能使标准峰的响应较高，说明本方法对灭蝇胺和环虫腈残留的测 定是可行的。灭蝇胺和环虫腈的标样溶液、空白羊毛试样及羊毛试样加标色谱图见图1。

      3.3线性关系及检出限用乙腈配制灭蝇 胺 -环虫腈（浓度比2∶1）混合标样贮备溶液（以灭蝇胺浓度计，以下同），并用乙腈依次稀释至0.05，0.1，0.5，1.0和5.0mg/L的标准工作 曲线溶液，在优化的实验条件下，灭蝇胺线性方程是y=216.95x－2.93，相关系数r=0.99999；环虫腈线性方程为 y=175.32x－1.19，相关系数r=0.99986，由此可见二者均有很好的线性关系。根据S/N≥10，本方法对灭蝇胺的检出限为0.02mg /kg，对环虫腈的检出限为0.01mg/kg。在0.05～5.0mg/L范围内能够满足定量分析二者残留的要求。

      Table2Spikedrecoveriesofcyromazineanddicyclanilongreasywoolsample3.4 精密度和回收率实验在相同的实验条件下，分别测定添加0.2，1.0和2.0mg/kg灭蝇胺标准品，0.1，0.5和1.0mg/kg环虫腈标准的含脂 羊毛样品各3次，平均回收率检测结果见表2。按照2.2节中灭蝇胺、环虫腈提取方法，对羊毛进行3种浓度的添加回收率和精密度实验，其平均添加回收率：灭 蝇胺在95.0%~99.9%之间，环虫腈在83.6%～92.2%之间；灭蝇胺的相对标准偏差为7.１%～17.６%，环虫腈的相对标准偏差为 6.1%～17.3%。说明本方法对羊毛中灭蝇胺和环虫腈的检测重现性好，准确度较高。

      3.5HPLC-MS/MS确证由于 HPLC-MS/MS的死体积小于HPLC，因此在相同的色谱条件下，环虫腈和灭蝇胺的保留时间较HPLC小。对环虫腈和灭蝇胺标准溶液在正离子模式下进 行全扫描，分别找出环虫腈和灭蝇胺准分子离子[M H]＋m/z191.0和167.0，以分子离子峰为母离子对离子源参数进行优化。在优化的色谱及质谱条件下，再对环虫腈和灭蝇胺的子离子进行全扫描，环 虫腈准分子离子在碰撞池内碰撞产生8个碎片离子m/z175.0，150.0，163.0，109.0，92.0，83.1，67.0和41.0，其中m /z150.0和163.0离子响应高，干扰少，因此将m/z150.0和163.0作为环虫腈的定性依据。灭蝇胺的［M H］＋离子在碰撞池内碰撞产生6个碎片离子m/z125.0，108.0，85.0，83.1，68.0和60.0，其中m/z125.0和85.0响应 高，干扰少，因此将它们作为灭蝇胺的定性依据。图2为环虫腈和灭蝇胺的总离子流图。

      Fig.2Totalionchromatogramofdicyclanilandcyromazine1. 环虫腈（Dicyclanil）；2.灭蝇胺（Cyromazine）.3.6样品测定应用建立的方法测定含脂羊毛样品中的灭蝇胺、环虫腈的含量，根据化 合物的色谱峰保留时间定性，峰面积定量，根据化合物的质谱离子丰度比进行确证，检测结果见表3，羊毛样品色谱图见图3。